感受態(tài)細胞是指能夠吸收外源DNA的細胞狀態(tài)，通常用于分子克隆、基因轉化及基因功能研究。不同的細菌對外源DNA的吸收能力有所不同，因此需要通過一系列的方法來使細胞處于感受態(tài)狀態(tài)。
一、制備方法
1、化學法：化學法是目前常用的制備
感受態(tài)細胞的方法，主要通過改變細胞的外部環(huán)境（如溫度、鹽濃度等）使細胞膜變得易于接受DNA。常見的化學法包括氯化鈣法和氯化鋰法。
2、電轉化法：電轉化法是利用電場對細胞膜進行短暫的電擊，使細胞膜局部發(fā)生破裂，從而形成膜孔，外源DNA通過這些孔道進入細胞。這種方法對大多數細菌和酵母具有較高的轉化效率，特別適用于一些對化學方法不敏感的細胞。操作時，細胞與外源DNA混合后置于電轉化儀中，施加一定強度的電場使其發(fā)生轉化。
3、熱激法：熱激法通過瞬時的溫度變化，改變細胞膜的流動性，使得細胞在較短時間內吸收外源DNA。常見的操作是將其與DNA混合后，經過一段時間的冰浴處理，再進行熱激2-5分鐘，最后立即轉回冰上。熱激法在一些大腸桿菌轉化中應用廣泛，且轉化效率較高。
二、優(yōu)化技巧
1、培養(yǎng)條件的優(yōu)化：細胞的生長狀態(tài)直接影響感受態(tài)細胞的制備效果。過度生長的細胞通常已經進入了穩(wěn)定期，此時細胞膜的通透性較差，無法有效吸收外源DNA。因此，在制備時，應該在對數生長期進行處理，細胞密度控制在合適范圍。
2、冷卻和熱激的優(yōu)化：在化學法制備時，冷卻和熱激的時間和溫度控制至關重要。冷卻時間太短，細胞膜無法改變其通透性；而熱激時間過長，細胞則容易死亡。因此，需要精確控制冷卻時間和熱激時間，以提高轉化效率。
3、鹽濃度的優(yōu)化：鹽濃度對細胞的感受態(tài)狀態(tài)有重要影響。過高的鹽濃度可能導致細胞死亡，而過低的鹽濃度則無法有效改變細胞膜的通透性。常見的優(yōu)化方法是通過調節(jié)氯化鈣或氯化鋰的濃度來達到最佳的轉化效果。
感受態(tài)細胞的制備方法多種多樣，其中化學法、電轉化法和熱激法是常用的技術。不同的細胞和實驗需求可能需要不同的優(yōu)化策略，因此，在制備過程中需根據實際情況進行調整，以獲得最佳的轉化效率。通過合理優(yōu)化細胞的生長狀態(tài)、冷卻和熱激的條件、鹽濃度、電轉化參數及細胞洗滌步驟等，可以顯著提高制備效率，為基因克隆、基因編輯等研究提供有力支持。
